| 石橋 洋平（いしばし ようへい） | データ更新日：2024.04.15 |
助教 ／
農学研究院
生命機能科学部門
生物機能分子化学
| 1. | 原田 絢泉、大滝 志郎、石橋 洋平、沖野 望, 海洋細菌由来セラミド-ガラクトース転移酵素の解析, 第16回セラミド研究会 第17回スフィンゴテラピィ研究会 合同年会, 2023.11. |
| 2. | 吉崎 綾乃、石橋 洋平、笠利 水斗、沖野 望, ラビリンチュラ類におけるセラミド構造に依存したセラミド合成量制御機構の解明, 第16回セラミド研究会 第17回スフィンゴテラピィ研究会 合同年会, 2023.11. |
| 3. | 矢崎 巽、石橋 洋平、沖野 望, ラビリンチュラ類の細胞外小胞の解析, 第96回 日本生化学会大会, 2023.11. |
| 4. | 亀山 智貴、石橋 洋平、沖野 望, 出芽酵母を用いたα-GalCerの生産, 第96回 日本生化学会大会, 2023.11. |
| 5. | 原田 絢泉、大滝 志郎、石橋 洋平、沖野 望, 海洋細菌Salnispira pacifica由来セラミドーガラクトース転移酵素の解析, 第96回 日本生化学会大会, 2023.11. |
| 6. | 吉崎 綾乃、石橋 洋平、笠利 水斗、沖野 望, ラビリンチュラ類におけるスフィンゴ脂質修飾酵素の解明と機能解析, 第96回 日本生化学会大会, 2023.11. |
| 7. | 山崎 亮弥、石橋 洋平、合田 初美、岩永 敦史、伊東 信、沖野 望, ラビリンチュラ類Auraitonchytrium limacinumにおけるEPA/n-3DPA産生機構の解明, 第96回 日本生化学会大会, 2023.11. |
| 8. | 石橋洋平、中島碧海、沖野望, ラビリンチュラ類の油滴タンパク質TLDP1と相互作用する因子の探索, 第8回ラビリンチュラシンポジウム, 2023.08. |
| 9. | 石橋 洋平、山口 舞、西田 裕貴、林 雅弘、伊東 信、沖野 望, ラビリンチュラ類のステロール多様性を生み出す分子基盤とその機能的意義の解明, 第65回日本脂質生化学会, 2023.06. |
| 10. | 谷村 龍治、石橋 洋平、沖野 望, ゲノム編集によるパリエティキトリウムの脂質組成の改変, 令和5年度生化学会九州支部例会, 2023.06. |
| 11. | 石橋 洋平, 海洋真核微生物ラビリンチュラ類におけるDHA合成システムの多様性, 第23回マリンバイオテクノロジー学会大会, 2023.05. |
| 12. | 谷脇 晃、石橋 洋平、沖野 望, Pseudomonas sp. TK-4株が生産するSCDase遺伝子の同定, 日本農芸化学会2023年度大会, 2023.03. |
| 13. | 石橋 洋平、山口 舞、定光 翔平、西田 裕貴、林 雅弘、伊東 信、沖野 望, ラビリンチュラ類におけるステロールの機能と代謝機構, 第7回 ラビリンチュラシンポジウム, 2022.12. |
| 14. | 中島 碧海、石橋 洋平、沖野 望, ラビリンチュラ類に特有に油滴タンパク質と相互作用する因子の探索と機能解析, 第95回 日本生化学会大会, 2022.11. |
| 15. | 山口 舞、石橋 洋平、西田 裕貴、林 雅弘、伊東 信、沖野 望, ラビリンチュラ類におけるステロール組成の変化に応じた細胞死および細胞分裂の制御機構の解明, 第95回 日本生化学会大会, 2022.11. |
| 16. | 石橋 洋平、定光 翔平、深堀 義朝、伊東 信、沖野 望, DGATファミリーに属する新規ステロールエステル合成酵素の構造と機能の解析, 第95回 日本生化学会大会, 2022.11. |
| 17. | 吉崎 綾乃、石橋 洋平、笠利 水斗、沖野 望, ラビリンチュラ類におけるスフィンゴ脂質修飾機構の解明と機能解析, 第15回セラミド研究会 第16回スフィンゴテラピィ研究会 合同年会, 2022.10. |
| 18. | 丹生谷 颯人、石橋 洋平、伊東 信、沖野 望, ETFQO の破壊はラビリンチュラ類の脂肪酸資化能を損なう, 日本農芸化学会 2022 年度西日本支部大会, 2022.09. |
| 19. | 伊東 佳穂、石橋 洋平、沖野 望, Sphingomonas paucimobilis由来のスフィンゴ糖脂質合成酵素の同定, 第44回蛋白質と酵素の構造と機能に関する九州シンポジウム, 2022.08. |
| 20. | 島 聡明、石橋 洋平、沖野 望, 抗生物質耐性に関わる緑膿菌の糖転移酵素に関する研究, 第44回蛋白質と酵素の構造と機能に関する九州シンポジウム, 2022.08. |
| 21. | 森 勇二、花田 理沙、重常 公彦、石橋 洋平、有田 誠、伊東 信、沖野 望, ラビリンチュラ類を用いた有用n-3PUFA代謝物の生産, 第44回蛋白質と酵素の構造と機能に関する九州シンポジウム, 2022.08. |
| 22. | 山崎 亮弥、石橋 洋平、合田 初美、伊東 信、沖野 望, ラビリンチュラ類における非典型的 PUFA 産生機構の解明, 令和4年度生化学会九州支部例会, 2022.06. |
| 23. | 吉崎 綾乃、石橋 洋平、笠利 水斗、沖野 望, ラビリンチュラ類におけるスフィンゴ脂質修飾酵素の同定と機能解析, 令和4年度生化学会九州支部例会, 2022.06. |
| 24. | 石橋 洋平、伊東 周敏、沖野 望, ラビリンチュラ類の脂質代謝の制御機構に関与する遺伝子の探索, 日本農芸化学会2022年度大会, 2022.03. |
| 25. | 吉崎 綾乃、 石橋 洋平、 笠利 水斗、沖野 望, スフィンゴ脂質の不飽和化はオーランチオキトリウムの運動性を制御する , 第6回ラビリンチュラシンポジウム, 2021.12. |
| 26. | 光谷 周星、徳永 弥咲、石橋 洋平、伊東 信、沖野 望, Thraustochytrium aureum におけるDHAの生理機能の解析, 第6回ラビリンチュラシンポジウム, 2021.12. |
| 27. | 永井 正義、石橋 洋平、渡邉 昂、沖野 望、伊東 信, 機能未知糖脂質EGおよびAEGの増加により誘導される病原性真菌の細胞死の分子機構 , 第40回糖質学会, 2021.10. |
| 28. | 伊東 佳穂、石橋 洋平、沖野 望, Sphingomonas paucimobilis 由来のスフィンゴ糖脂質の解析とその合成酵素の同定 , 第40回糖質学会, 2022.06. |
| 29. | 朱 浩賢、石橋 洋平、沖野 望, 緑膿菌由来グルコシルジアシルグリセロール合成酵素の解析 , 第40回糖質学会, 2021.10. |
| 30. | 石橋 洋平、伊東 信、平林 義雄, Sirtuin 阻害剤Cambinol はGlcCer 合成酵素を阻害する , 第14回セラミド研究会 学術集会, 2021.10. |
| 31. | 伊東佳穂、石橋 洋平、沖野 望, Sphingomonas paucimobilis 由来のスフィンゴ糖脂質合成酵素の同定, 第14回セラミド研究会 学術集会, 2021.10. |
| 32. | 光谷 周星、徳永 弥咲、石橋 洋平、伊東 信、沖野 望, ラビリンチュラ類Thraustochytrium aureumにおけるDHAの重要性, 日本農芸化学会2021年度西日本・中四国・関西支部 合同大会, 2021.09. |
| 33. | 伊東 周敏、石橋 洋平、沖野 望, ラビリンチュラ類における窒素源に着目した脂質代謝制御機構の解明, 日本農芸化学会2021年度西日本・中四国・関西支部 合同大会, 2021.09. |
| 34. | 石橋 洋平, スフィンゴ糖脂質およびグリセロ脂質代謝酵素の機能解明, 令和3年度日本生化学会九州支部例会, 2021.06. |
| 35. | 石橋 洋平, 新規脂質代謝酵素および制御因子に関する生物横断的研究, 令和3年度日本農芸化学会西日本支部例会, 2021.06. |
| 36. | 石橋 洋平、定光 翔平、深堀 義朝、渡辺 昂、林 雅弘、伊東 信、沖野 望, ジアシルグリセロールではなくステロールを基質とするDGAT2ホモログの発見と機能解析, 第63回 日本脂質生化学会, 2021.06. |
| 37. | 石橋 洋平、安宅 祐輔、伊東 信、沖野 望, CRISPR-Cas9を用いたラビリンチュラ類のゲノム編集, 日本農芸化学会2021年度大会, 2021.03. |
| 38. | 石橋 洋平, 新規脂質代謝酵素および制御因子に関する生物横断的研究, 日本農芸化学会2021年度大会, 2021.03. |
| 39. | 定光 翔平、石橋 洋平、深堀 義朝、林 雅弘、渡辺 昂、沖野 望、伊東 信, ラビリンチュラ類から見出された新規ステロールエステル合成酵素の機能解析, 日本農芸化学会2019年度大会, 2020.03. |
| 40. | 丹生谷 颯人、石橋 洋平、伊東 信、沖野 望, ラビリンチュラ類のミトコンドリアにおける脂肪酸β酸化系の破壊は代謝性アシドーシスを引き起こす, 日本農芸化学会2019年度大会 , 2020.03. |
| 41. | 石橋 洋平、青木 敬祐、沖野 望、林 雅弘、伊東 信, ラビリンチュラ類特有のリパーゼ/ホスホリパーゼのユニークな位置特異性は海洋微生物の種間競争と脂肪酸取り込みに関与する, 日本農芸化学会2019年度大会, 2020.03. |
| 42. | 石橋 洋平、永富 正樹、冨永 弦、長谷川 菜摘、宮本 智文、森本 恵、笠利 水斗、小原 淳一郎、山路 顕子、沖野 望、小林 俊秀、伊東 信, 海洋原生生物におけるスフィンゴ脂質の構造、代謝および局在解析, 第12回セラミド研究会 , 2019.10. |
| 43. | 石橋 洋平、青木 敬祐、沖野 望、林 雅弘、伊東 信, 新規リパーゼ/ホスホリパーゼのユニークな位置特異性は海洋微生物の種間競争と脂肪酸取り込みに関与する, 第92回 日本生化学会大会 , 2019.09. |
| 44. | 丹生谷 颯人、石橋 洋平、沖野 望、伊東 信, ラビリンチュラ類の新規脂質代謝関連遺伝子の探索, 第43回 蛋白質と酵素の構造と機能に関する九州シンポジウム , 2019.09. |
| 45. | Minato Kasari, Natsumi Hasegawa, Yohei Ishibashi, Tomofumi Miyamoto, Masahiro Hayashi, Daiske Honda, Nozomu Okino, Makoto Ito, Distribution of a novel sphingolipid, ceramide glyoxylic ethanolamine (CGE), in thraustochytrids, First International Conference on Labyrinthulean Protists (ICoLP) , 2019.08. |
| 46. | Yohei Ishibashi, Keisuke Aoki, Nozomu Okino, Masahiro Hayashi, Makoto Ito, A novel thraustochytrid lipase/phospholipase with unique positional specificity contributes to microbial competition and fatty acid acquisition from the environment, First International Conference on Labyrinthulean Protists (ICoLP) , 2019.08. |
| 47. | Nozomu Okino, Hiroyoshi Wakisaka, Yohei Ishibashi, Makoto Ito, Visualization of endoplasmic reticulum and mitochondria in Aurantiochytrium limacinum ATCC MYA-1381, First International Conference on Labyrinthulean Protists (ICoLP) , 2019.08. |
| 48. | Evgeniya Kiseleva, Shigeo Suzuki, Yuki Nishida, Yohei Ishibashi, Nozomu Okino, Makoto Ito, Aurantiochytrium sp. 1 AJ7869 strain, a novel production platform for functional lipids, other than DHA, First International Conference on Labyrinthulean Protists (ICoLP) , 2019.08. |
| 49. | 渡辺 昂、岩崎 未央、石橋 洋平、沖野 望、伊東 信, 病原性真菌Cryptococcus neoformans のGlcCer の品質管理の生理的意義, 第38回日本糖質学会年会（日本糖質学会創設40周年記念大会） , 2019.08. |
| 50. | 沖野 望、李 夢白、石橋 洋平、伊東 信, Zymomonas mobilisはグルクロノシルセラミドが欠損するとセラミドホスホグリセロールを合成する, 第61回日本脂質生化学会, 2019.07. |
| 51. | 渡辺 昂、溝口 正輝、石橋 洋平、沖野 望、伊東 信, 病原性真菌Aspergillus fumigatusのエルゴステリル-β-グルコシド分解酵素（AfEGCrP2）の生理機能の解析, 第61回日本脂質生化学会 , 2019.07. |
| 52. | Takashi Watanabe, Mio Iwasaki, Juichiro Ohara, Yohei Ishibashi, Nozomu Okino, Makoto Ito, Quality control of glucosylceramide is involved in the pathogenicity in Cryptococcus neoformans, 60th International Converence on the Bioscience of Lipids , 2019.06. |
| 53. | Nozomu Okino, Mengbai Li, Yohei Ishibashi, Makoto Ito, Identification and functional characterization of ceramide UDP-glucronosyltransferase in Zymomonas mobilis, 60th International Converence on the Bioscience of Lipids , 2019.06. |
| 54. | 丹生谷 颯人、野田 樹、河本 洋、石橋 洋平、沖野 望、伊東 信, マダイΔ６デサチュラーゼのクローニングとn-3PUFA生合成能の解析, 日本生化学会九州支部例会 , 2019.06. |
| 55. | 石橋 洋平、西田 裕貴、渡辺 昂、林 雅弘、沖野 望、伊東 信, 海洋性油糧微生物ラビリンチュラ類を用いたステロールの選択的生産, 日本農芸化学会2019年度大会 , 2019.03. |
| 56. | 長谷川 菜摘、石橋 洋平、宮本 智文、林 雅弘、沖野 望、伊東 信, 新奇複合スフィンゴ脂質セラミドグリオキシルエタノールアミンの発見, 第11回セラミド研究会 , 2018.10. |
| 57. | 石橋 洋平、深堀 義朝、山元 悠樹、石丸 真由、沖野 望、林 雅弘、伊東 信, 新規ステロールエステル合成酵素遺伝子の発見と機能解析, 第91回 日本生化学会大会, 2018.09. |
| 58. | Yohei Ishibashi, Keisuke Aoki, Masahiro Hayashi, Nozomu Okino, Makoto Ito, A novel lipase/phospholipase with different positional specificity for triacylglycerol and phosphatidylcholine, 59th International Conference on the Bioscience of Lipids, 2018.09. |
| 59. | 石橋 洋平、青木 敬祐、林 雅弘、沖野 望、伊東 信, トリアシルグリセロール（TG）とホスファチジルコリン（PC）で位置特異性が異なる新規リパーゼ/ホスホリパーゼ, 第60回脂質生化学会, 2018.06. |
| 60. | 石橋 洋平、青木 敬祐、増田 栞、林 雅弘、沖野 望、伊東 信, ラビリンチュラ類に特有の遺伝子の探索と機能解析, 第20回マリンバイオテクノロジー学会, 2018.05. |
| 61. | 石橋 洋平、青木 敬祐、林 雅弘、沖野 望、伊東 信, 海洋性油糧微生物ラビリンチュラ類からの新規リパーゼの探索, 石橋 洋平、青木 敬祐、林 雅弘、沖野 望、伊東 信, 2018.03. |
| 62. | 石橋 洋平, 脂質代謝に関与する新規酵素・制御因子に関する研究, 2017年度 農芸化学会西日本支部例会, 2018.01. |
| 63. | 石橋 洋平、青木 敬祐、林 雅弘、沖野 望、伊東 信, ストラメノパイル間の比較ゲノム解析により見いだされたラビリンチュラ類の新規分泌型リパーゼの機能解析, 2017年度 生命科学系学会合同年次大会（ConBio 2017）, 2017.12. |
| 64. | 石橋 洋平、伊東 信、平林 義雄, ホスファチジルイノシトール4 リン酸を介したスフィンゴ脂質合成制御機構, セラミド研究会 10周年記念大会, 2017.10. |
| 65. | 石橋 洋平、青木 敬祐、林 雅弘、沖野 望、伊東 信, 海洋微生物ラビリンチュラ類から見いだされた新規分泌型リパーゼの生理機能, 第41回蛋白質と酵素の構造と機能に関する九州シンポジウム, 2017.08. |
| 66. | 石橋 洋平、伊東 信, 質量分析計を活用したラビリンチュラ類の脂質代謝機構の解明, 第4回 ラビリンチュラ・シンポジウム, 2017.07. |
| 67. | 石橋 洋平、青木 敬祐、林 雅弘、沖野 望、伊東 信, 油糧微生物ラビリンチュラ類から見いだされた新規リパーゼの機能解析, 第59回 日本脂質生化学会, 2017.06. |
| 68. | 石橋洋平、伊東 信、平林義雄, ホスホイノシタイドを介したスフィンゴ脂質の合成制御機構, 日本生化学会九州支部例会, 2017.05. |
| 69. | 石橋 洋平, 伊東 信, 海洋微生物ラビリンチュラ類における選択マーカーリサイクル法の開発, 日本農芸化学会2017年度大会, 2017.03. |
| 70. | 石橋 洋平, 伊東 信, 平林 義雄, Cambinolはグルコシルセラミド合成酵素を阻害する, 第89回 日本生化学会大会, 2016.09. |
| 71. | Yohei Ishibashi, Masaki Nagatomi, Nozomu Okino, Makoto Ito, Composition, localization, and metabolism of sphingolipids in thraustochytrids, 57th International Conference of the Bioscience of Lipids, 2016.09. |
| 72. | 石橋 洋平, 伊東 信, 平林 義雄, ホスホイノシタイドはグルコシルセラミド合成酵素を阻害する, 第35回 日本糖質学会年会, 2016.09. |
| 73. | 石橋 洋平, 合田 初美, 濱口 理恵, 伊東 信, Parietichytrium 属の DHA 合成経路, 第3回ラビリンチュラ・シンポジウム, 2016.07. |
| 74. | 石橋 洋平, 比較グライコーム研究会, 2016.06. |
| 75. | 石橋 洋平, 沖野 望, 伊東 信, 海洋微生物ラビリンチュラ類の高度不飽和脂肪酸含有ステロールエステル代謝機構の解明, 第58回 日本脂質生化学会, 2016.06. |
| 76. | 石橋 洋平, 質量分析計を用いたラビリンチュラ類の脂質代謝機構の解明, 第18回マリンバイオテクノロジー学会, 2016.05. |
| 77. | 石丸真由, 石橋 洋平, 渡邉 昂, 沖野 望, 伊東 信, 海洋微生物ラビリンチュラ類におけるPUFA含有ステロールエステルの合成機構, 日本農芸化学会2016年度大会, 2016.03. |
| 78. | 石橋 洋平, 持永 聖也, 合田 初美, 青木 敬佑, 永富 正樹, 冨永 弦, 沖野 望, 伊東 信, 質量分析計を用いた海洋性油糧微生物ラビリンチュラ類の脂質代謝解析, 微生物学の新たな発展、ゲノムから機能・実用に関する九州シンポジウム, 2015.12. |
| 79. | 石橋 洋平, 青木 敬佑, 伊東 信, 質量分析計を用いた海洋性油糧微生物ラビリンチュラ類の脂質組成解析, 第38回日本分子生物学会年会/第88回日本生化学会大会 合同大会, 2015.12. |
| 80. | 石橋 洋平, 平林 義雄, AMP 活性化プロテインキナーゼによる糖ヌクレオチドおよびグルコシルセラミド量の制御機構, 第34回日本糖質学会年会, 2015.08. |
| 81. | 石橋 洋平, 伊東 信, LC-ESI-MS を用いたラビリンチュラ類の脂質組成解析, ラビリンチュラ・シンポジウム ～オーランチオキトリウムとその仲間たちの生物学と産業応用～, 2015.07. |
| 82. | 石橋 洋平, 平林 義雄, AMP-activated Protein Kinase Supresses Biosynthesis of Glycosylceramide by Reducing Intracellular Sugar Nucleotides, 第10回スフィンゴテラピィ研究会, 2015.06. |
| 83. | 石橋 洋平, AMP活性化プロテインキナーゼは細胞内の糖ヌクレオチド量を制御する, 第38回 蛋白質と酵素の構造と機能に関する九州シンポジウム, 2014.09. |
| 84. | 石橋 洋平, 平林 義雄, 細胞内エネルギーセンサーAMPKによるグルコシルセラミド合成量制御機構, 日本脂質生化学会, 2014.06. |
| 85. | 石橋 洋平, 平林 義雄, AMP活性化プロテインキナーゼによる糖ヌクレオチドおよびグルコシルセラミド量の制御機構, 日本糖質学会, [URL], グルコシルセラミド（GlcCer）の過剰蓄積は、ゴーシェ病やパーキンソン病、インスリン抵抗性や多発性嚢胞腎といった各種病態の引き金となる。このような状況を避けるため、細胞内のGlcCer量を制御する何らかの機構が存在すると考えられるが、その詳細は不明である。AMP-activated protein kinase (AMPK)は、細胞内のエネルギー状態を反映するAMP/ADP/ATP比に応じて活性が制御されるセリン/スレオニンキナーゼであり、糖や脂質の代謝を制御する上位因子である。本研究で我々は、メトフォルミンなどのAMPK活性化剤を細胞に添加することで、AMPK依存的にGlcCer量の減少とGlcCer合成活性の低下が引き起こされることを見出した。この現象の主な要因は、前駆物質であるUDP-グルコース量の低下であった。AMPKの基質となりUDP-グルコース量を変動させ得る因子の探索を行った結果、UDP-グルコースに作用しUMPとグルコース１リン酸を生成するNudt14というPyrophosphataseがAMPKによってリン酸化され、活性化することが分かった。しかしながら、Nudt14の発現を抑制させた細胞においても、AMPK活性化時のUDP-グルコースの減少は引き起こされた事から、AMPKによるUDP-グルコース量の制御に関与している因子はNudt14だけではない事が示された。本研究によって、AMPKを介した細胞内糖ヌクレオチドおよびGlcCerの合成量を制御する機構が見いだされた。GlcCerの過剰蓄積を主要因とする各種病態に対する新しいターゲットとなることが期待される。. |
| 86. | 石橋 洋平, 永松 祐輔, 宮本 智文, 松永 尚之, 沖野 望, 山口 邦子, 伊東 信, The use of EGALC reveals the presence of a novel ether-linked phytol-containing digalactosylglycerolipid in the marine green alga, Ulva pertusa, SFG & JSCR 2014 Joint Annual Meeting, 2014.11, Galactosylglycerolipids (GGLs) and chlorophyll are characteristic components of chloroplast in photosynthetic organisms. Although chlorophyll is anchored to the thylakoid membrane by phytol (tetramethylhexadecenol), this isoprenoid alcohol has never been found as a constituent of GGLs. We here describe a novel GGL, in which phytol is linked to the glycerol backbone via an ether linkage (Ishibashi et al, 2014). This unique GGL was identified as an Alkaline-resistant and Endogalactosylceramidase (EGALC)-sensitive GlycoLipid (AEGL) in the marine green alga, Ulva pertusa. EGALC is an enzyme that is capable of cleaving the β-glycosidic linkage between R-Galα/β1-6Gal and the lipid moiety, thereby releasing intact galactooligosaccharide from glycolipids. The specificity of EGALC is very high for the sugar moiety, but relatively wide for the lipid moiety, i.e., it hydrolyzes GGLs as well as glycosphingolipids (GSLs). EGALC also catalyzes transglycosylation reaction, in which the intact sugar chains are transferred from GSLs/GGLs to the primary hydroxyl group of various 1-alkanols to generate neoglycoconjugates. We previously developed a sensitive and reliable method to detect GSLs/GGLs that share the R-Galα/β1-6Galβ1- structure, using the transglycosylation reaction of EGALC. The use of EGALC revealed that AEGLs were ubiquitously distributed in not only green, but also red and brown marine algae; however, they were rarely detected in terrestrial plants, eukaryotic phytoplankton, or cyanobacteria. The structure of U. pertusa AEGL was determined following its purification to 1-O-phytyl-3-O-Galα1-6Galβ1-sn-glycerol by mass spectrometric and nuclear magnetic resonance analyses. To the best of our knowledge, this is the first study to identify a phytol-containing GGL that may be present in the thylakoid membrane of chloroplasts in marine algae. Since GGLs have been shown to possess important roles in the organization and stabilization of the thylakoid membrane, the novel GGL, AEGL, could have a specific role in photosynthesis in marine algae.. |
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