九州大学-研究者情報 [松山倫也 (学術研究員) 農学研究院資源生物科学部門]

1.	Michiya Matsuyama, Egg Production, 109 pp. In “HANDBOOK OF APPLIED FISHERIES REPRODUCTIVE BIOLOGY FOR STOCK ASSESSMENT AND MANAGEMENT” (R. Domínguez-Petit, H. Murua, F. Saborido-Rey and E. Trippel, ed), 2014.12.
2.	Michiya Matsuyama, Sethu Selvaraj, Mitsuo Nyuji, Hirofumi Ohga, Involvement of Brain-Pituitary-Gonadal Axis on Regulation of the Reproductive Cycle in Female Chub mackerel. In “Sexual Plasticity and Gametogenesis in Fishes” (Senthilkumaran B, ed), Nova Science Publishers, 251-274, 2013.08.
3.	M. Matsuyama, Follicular Steroidogenesis in Fish, Science Publishers (USA), In “Fish Reproduction” (Rocha MJ, Arukwe A, Kapoor BG, eds.), 171-199. , 2007.12.
4.	松山倫也，太田耕平，山口明彦, ブリの生殖生理, 恒星社厚生閣, 水産学シリーズ148「ブリの資源培養と養殖業の展望」, 64-75, 2006.04.
5.	松山倫也、太田耕平, 性ステロイドホルモン, 海洋出版, 月刊海洋、Vol. 32, 81-89, 2000.02.
6.	松山倫也・小林牧人・足立伸次, 魚類の配偶子形成機構　-水産における基礎と応用-, 海洋出版, 月刊海洋、Vol. 32, 65-68, 2000.02.

主要原著論文

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1.	Sakaguchi K, Yoneda M, Sakai N, Nakashima K, Kitano H, Matsuyama M, Comprehensive Experimental System for a Promising Model Organism Candidate for Marine Teleosts, Scientific Reports, org/10.1038/ s41598-019-41468-8, 9, Article number 4948, 2019.03, A comprehensive experimental system for Japanese anchovy, a promising candidate model organism for marine teleosts, was established. Through the design of a rearing/spawning facility that controls the photoperiod and water temperature, one-cell eggs were continuously obtained shortly after spawning throughout the rearing period. The stages of eggs are indispensable for microinjection experiments, and we developed an efficient and robust microinjection system for the Japanese anchovy. Embryos injected with GFP mRNA showed strong whole-body GFP fluorescence and the survival rates of injected- and non-injected embryos were not significantly different, 87.5% (28 in 32 embryos) and 90.0% (45 in 50 embryos), respectively. We verified that the Tol2 transposon system, which mediates gene transfer in vertebrates, worked efficiently in the Japanese anchovy using the transient transgenesis protocol, with GFP or DsRed as the reporter gene. Finally, we confirmed that genome-editing technologies, namely Transcription Activator-Like Effector Nucleases (TALEN) and Clustered Regulatory Interspaced Short Palindromic Repeats (CRISPR)/Cas9, were applicable to the Japanese anchovy. In practice, specific gene-disrupted fishes were generated in the F1 generation. These results demonstrated the establishment of a basic, yet comprehensive, experimental system, which could be employed to undertake experiments using the Japanese anchovy as a model organism for marine teleost fish..
2.	Ohga H, Selvaraj S, Matsuyama M, The Roles of Kisspeptin System in the Reproductive Physiology of Fish with Special Reference to Chub Mackerel Studies as Main Axis, Frontiers in Endocrinology, 10.3389/fendo.2018.00147, 9, 1-15, 2018.10, Kisspeptin, a novel neuropeptide product of the Kiss1 gene, activates the G protein-coupled membrane receptor G protein-coupled receptor 54 (now termed Kiss1r). Over the last 15 years, the importance of the kisspeptin system has been the subject of much debate in the mammalian research field. At the heart of the debate is whether kisspeptin is an absolute upstream regulator of gonadotropin-releasing hormone secretion, as it has been proposed to be the master molecule in reproductive events and plays a special role not only during puberty but also in adulthood. The teleostean kisspeptin system was first documented in 2004. Although there have been a number of kisspeptin studies in various fish species, the role of kisspeptin in reproduction remains a subject of controversy and has not been widely recognized. There is an extensive literature on the physiological and endocrinological bases of gametogenesis in fish, largely derived from studying small, model fish species, and reports on non-model species are limited. The reason for this discrepancy is the technical difficulty inherent in developing rigorous experimental systems in many farmed fish species. We have already established methods for the full life-cycle breeding of a commercially important marine fish, the chub mackerel (cm), and are interested in understanding the reproductive function of kisspeptins from various perspectives. Based on a series of experiments clarifying the role of the brain-pituitary-gonad axis in modulating reproduction in cm, we theorize that the kisspeptin system plays an important role in the reproduction of this scombroid species. In this review article, we provide an overview of kisspeptin studies in cm, which substantially aids in elucidating the role of kisspeptins in fish reproduction..
3.	Hirofumi Ohga, Hayato Adachi, Hajime Kitano, Akihiko Yamaguchi, Michiya Matsuyama, Kiss1 hexadecapeptide directly regulates gonadotropin-releasing hormone 1 in the scombroid fish, chub mackerel, Biology of Reproduction, 10.1095/biolreprod.116.142083, 96, 2, 376-388, 2017.02, Here we report that the Kiss1 hexadecapeptide (Kiss1-16) directly regulates the functional form of gonadotropin-releasing hormone (GnRH) in the preoptic area (POA) of a scombroid fish model. In this study, we analyzed the localization of two kisspeptin (kiss1 and kiss2) neurons and two kisspeptin receptors (kissr1 and kissr2) in the brain of adult chub mackerel using in situ hybridization to determine whether the kisspeptin receptors co-localize with GnRH1 neurons. The kiss1-and kiss2-expressing neurons were mainly localized in the nucleus recessus lateralis (NRL) and the nucleus of the posterior recess (NRP) in the hypothalamus. Kissr1 was present in the anterior POA and the habenular nucleus. Kissr2 was widely distributed, including in the POA, lateral tuberal nucleus, NRL, and NRP. Notably, GnRH1 was expressed in neurons in the POA, and these neurons co-expressed kissr1. In contrast, kissr2 was expressed abundantly in the vicinity of GnRH1 neurons, but their co-expression did not seem to occur. We also characterized the endogenous mature form of the Kiss1 peptide. An in vitro reporter gene assay clearly showed that Kiss1-16 (HQDMSSYNFNSFGLRY-NH2) was more potent at receptor activation than Kiss1 pentadecapeptide (Kiss1-15), which is the form of Kiss1 found in other fish species. This study strongly suggests that kisspeptin signaling, especially Kiss1 signaling, is important for regulating reproduction in scombroid fish..

主要総説, 論評, 解説, 書評, 報告書等

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1.	松山倫也, 魚類の生殖生理学的研究と水産増養殖・資源管理への応用, 日本水産学会誌, 2008.08.
2.	松山倫也・白石哲朗・入路光雄・岩谷美穂・北野　載・山口明彦, 飼育下におけるマサバの生殖生理, 西海ブロック漁海況研報, 2007.03.
3.	松山倫也, 多獲性浮魚類の再生産研究高度化に向けての生殖生理学的手法の適用, 水産総合研究センター研究報告, 別冊４号，51-62, 2006.01.

主要学会発表等

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1.	松山　倫也, 水産物におけるゲノム編集の現状と展望, 平成26年度日本水産学会秋季大会ミニシンポジウム, 2014.09.
2.	白石哲朗，入路光雄，山口明彦，松山倫也, 飼育下におけるマサバの産卵誘導と産卵期間、産卵時刻、産卵量、受精率の変化, 日本水産海洋学会, 2006.11.
3.	M. Nyuji, T. Shiraishi, H. Kitano, V.V. In, A. Yamaguchi, K. Okamoto, S. Onoue, M. Matsuyama, Immunocytochemical identification of two different GtH cells and changes of GtH activities during reproductive cycles in the pituitary of chub mackerel, Scomber japonicus, 2006 Korea-Japan, Japan-Korea Joint Sympojium on Aquaculture, 2006.10.
4.	H. Rashid, K-H. Lee, A. Yamaguchi, M. Matsuyama, Brain type aromatase expression in gonad and brain and its role in germ cell proliferation in Japanese pufferfish, Takifugu rubripes., 2006 Korea-Japan, Japan-Korea Joint Sympojium on Aquaculture, 2006.10.

特許出願・取得

特許出願件数 0件

特許登録件数 3件

学会活動

所属学会名

日本水産学会

日本水産増殖学会

日本水産海洋学会

日本比較内分泌学会

学協会役員等への就任

2014.04～2016.03, 全国水産実験所長会議, 会長.

2012.04, 日本水産学会九州支部会, 幹事.

2013.04～2014.03, 全国水産実験所長会議, 副会長.

2012.04～2014.03, 日本水産学会九州支部会, 支部長.

2012.04～2016.03, 日本水産学会, 理事.

2011.04～2021.03, 日本水産海洋学会, 幹事.

2003.04～2011.03, 日本水産学会, 評議員.

2003.04～2021.03, 日本水産増殖学会, 評議員.

1998.04～2012.03, 日本水産学会九州支部会, 評議員.

学会大会・会議・シンポジウム等における役割

2014.09.19～2014.09.22, 平成26年度日本水産学会秋季大会, 大会委員長.

2014.09.19～2014.09.19, 平成26年度日本水産学会秋季大会ミニシンポジウム「水産物におけるゲノム編集の現状と展望」, 企画責任.

2013.12.06～2013.12.06, 平成２５年度日本水産学会九州支部例会・シンポジウム「地域水産業に貢献する試験研究‐大分県の事例を通して考える‐」, 企画責任.

2012.09.29～2013.09.29, 平成２４年度日本水産学会九州支部例会・シンポジウム「九州の自治体・行政における水産振興戦略‐閉塞突破に向けて‐」, 企画責任者.

2012.03.30～2012.03.30, 平成24年度日本水産学会春季大会シンポジウム「漁業資源の繁殖特性研究－飼育実験とバイオロギングによる新たな展開」, 企画責任者.

2010.10.30～2010.10.31, 第９回日本水産増殖学会大会, 大会委員長.

2007.12.01～2007.12.01, 平成19年度東京大学海洋研究所共同利用研究集会「繁殖特性の時空間的変異が個体群動態へおよぼす影響」, 企画開催.

2005.10.01～2005.10.01, 平成17年度日本水産学会九州支部シンポジウム「夢馳せる水産基礎研究」, 企画開催.

2005.04.04～2005.04.04, 平成17年度日本水産学会シンポジウム「ブリ - その資源・生産・消費」, 企画開催.

2003.05.18～2003.05.21, 7th International Symposium on Reproductive Physiology of Fish, 組織委員会委員.

その他の研究活動

外国人研究者等の受入れ状況

2015.05～2015.05, 2週間未満, Sharnalata Agro Fisheries Ltd., Bangladesh, 九州大学農学部同窓会.

2015.04～2015.10, 1ヶ月以上, National Institute of Oceanography & Fisheries, Egypt, エジプト政府.

2012.05～2012.05, 2週間未満, University of California, Santa Barbara, UnitedStatesofAmerica, NIH.

2001.06～2003.05, 1ヶ月以上, バングラデシュ国立水産研究所（Mymensingh）, Bangladesh, 日本学術振興会.

受賞

第40回日本比較内分泌学会若手研究者最優秀発表賞, 日本比較内分泌学会, 2015.12.

第39回日本比較内分泌学会若手研究者最優秀発表賞, 日本比較内分泌学会, 2014.11.

日本水産増殖学会第13回大会ベストポスター賞, 日本水産増殖学会, 2014.10.

最優秀講演賞(平成25年度日本水産学会九州支部大会), 日本水産学会九州支部, 2014.01.

日本水産増殖学会第9回大会優秀ポスター賞, 日本水産増殖学会, 2010.10.

平成20年度日本水産学会論文賞, 日本水産学会, 2009.03.

Best Poster Award in　8th World Fisheries Congress, 8th World Fisheries Congress, 2008.10.

平成19年度日本水産学会賞進歩賞, 日本水産学会, 2008.03.

研究資金

科学研究費補助金の採択状況(文部科学省、日本学術振興会)

2019年度～2021年度, 基盤研究(A), 代表, 国産ゲノム編集技術による海産魚の新品種作出.

2018年度～2020年度, 基盤研究(A), 分担, 魚類成長－回遊モデルを用いたカタクチイワシの生活史戦略の解明.

2017年度～2018年度, 挑戦的研究（萌芽）, 代表, 30年ぶりの再開－マイワシの実験資源学への挑戦.

2015年度～2018年度, 基盤研究(A), 代表, 完全養殖系とゲノム編集技術を用いた海産魚における新規育種基盤技術の開発.

2014年度～2015年度, 萌芽研究, 代表, 魚類の固定卵巣標本透明化法の開発.

2013年度～2015年度, 特別研究員奨励費, 代表, 新規合成キスぺプチンを用いた有用魚類の成熟制御に関する研究.

2011年度～2013年度, 特別研究員奨励費, 代表, 養殖魚の春機発動を制御する新規キスペプチンシステムに関する研究.

2011年度～2012年度, 挑戦的萌芽研究, 代表, 魚類の春季発動を制御する脳機能研究.

2008年度～2010年度, 基盤研究(B), 代表, マサバをモデルとした卵数法による資源量直接推定法における問題点の克服と適用.

2007年度～2008年度, 萌芽研究, 代表, 複数の性的表現型を持つ性転換魚類の遺伝様式解析のための実験モデル創出.

2005年度～2006年度, 萌芽研究, 代表, ニューロステロイドより読み解く魚類の性と性行動の可逆性を支配する脳機能研究.

2004年度～2006年度, 基盤研究(B), 代表, 浮魚資源の産卵資源量（ＳＳＢ）推定のための分子マーカーの開発.

競争的資金(受託研究を含む)の採択状況

2020年度～2022年度, 生物系特定産業技術研究支援センター　イノベーション創出強化研究推進事業, 代表, 完全養殖マサバの生産拡大と海外輸出のための戦略的育種・生産基盤の開発.

2015年度～2016年度, 公益財団法人カシオ科学振興財団研究助成, 代表, スーパー・キスによる魚類の春機発動早期化技術の開発.

共同研究、受託研究(競争的資金を除く)の受入状況

2020.04～2021.03, 代表, 他魚種体内での養殖魚生殖細胞の増殖および成熟方法の開発.

2020.01～2020.03, 代表, 他魚種体内での養殖魚生殖細胞の増殖および成熟方法の開発.

2018.04～2019.03, 分担, SIP(戦略的イノベーション創造プログラム)「次世代農林水産業創造技術」における「生産者ニーズの高い形質を有するマグロ創生」.

2017.04～2018.03, 分担, SIP(戦略的イノベーション創造プログラム)「次世代農林水産業創造技術」における「生産者ニーズの高い形質を有するマグロ創生」.

2016.04～2017.03, 分担, SIP(戦略的イノベーション創造プログラム)「次世代農林水産業創造技術」における「生産者ニーズの高い形質を有するマグロ創生」.

2015.05～2016.03, 分担, クロマグロ養殖最適親魚選抜・確保技術開発事業「近縁モデル魚種を用いた早期成熟関連遺伝子の探索」.

2015.04～2016.03, 分担, 資源変動要因分析調査事業「マイワシ、マサバ太平洋系群のうち、仔稚魚の生残に関わる母性効果および生育環境の解明」.

2015.04～2016.03, 分担, SIP(戦略的イノベーション創造プログラム)「次世代農林水産業創造技術」における「生産者ニーズの高い形質を有するマグロ創生」.

2014.04～2015.03, 分担, クロマグロ養殖最適親魚選抜・確保技術開発事業「近縁モデル魚種を用いた早期成熟関連遺伝子の探索」.

2014.04～2015.03, 分担, 資源変動要因分析調査事業「マイワシ、マサバ太平洋系群のうち、仔稚魚の生残に関わる母性効果および生育環境の解明」.

2013.05～2014.03, 分担, 資源変動要因分析調査事業「マイワシ、マサバ太平洋系群のうち、仔稚魚の生残に関わる母性効果および生育環境の解明」.

2012.04～2013.03, 分担, 資源変動要因分析調査事業「マイワシ、マサバ太平洋系群のうち、仔稚魚の生残に関わる母性効果および生育環境の解明」.

2013.05～2014.03, 分担, クロマグロ養殖最適親魚選抜・確保技術開発事業「近縁モデル魚種を用いた早期成熟関連遺伝子の探索」.

2012.04～2013.03, 分担, クロマグロ養殖最適親魚選抜・確保技術開発事業「近縁モデル魚種を用いた早期成熟関連遺伝子の探索」.

2011.04～2012.03, 代表, 海産魚類の精原幹細胞培養技術開発.

2011.04～2012.03, 分担, クロマグロ養殖最適親魚選抜・確保技術開発事業「近縁モデル魚種を用いた早期成熟関連遺伝子の探索」.

2011.04～2012.03, 分担, 資源変動要因分析調査事業「マイワシ、マサバ太平洋系群のうち、仔稚魚の生残に関わる母性効果および生育環境の解明」.

2011.07～2012.03, 代表, 唐津市新水産資源創出事業委託業務.

2010.04～2011.03, 分担, 「魚種交替の予測・利用技術の開発」委託事業.

2010.04～2011.03, 分担, シンクロトロン光を利用したケンサキイカの生態解明に関する研究.

2010.04～2011.03, 分担, 資源動向要因分析調査「マイワシ・カタクチイワシ対馬暖流系群」.

2010.04～2011.03, 分担, 水産重要魚種における飼育実験系の確立と環境影響メカニズムの解析.

2009.04～2010.03, 分担, 資源動向要因分析調査「マイワシ・カタクチイワシ対馬暖流系群」.

2009.04～2010.03, 分担, シンクロトロン光を利用したケンサキイカの生態解明に関する研究.

2009.04～2010.03, 分担, 水産重要魚種における飼育実験系の確立と環境影響メカニズムの解析.

2009.04～2010.03, 分担, 「魚種交替の予測・利用技術の開発」委託事業.

2008.04～2009.03, 分担, 「魚種交替の予測・利用技術の開発」委託事業.

2008.04～2009.03, 分担, 水産重要魚種における飼育実験系の確立と環境影響メカニズムの解析.

2007.06～2008.03, 分担, 「魚種交替の予測・利用技術の開発」委託事業.

2007.04～2008.03, 分担, 水産重要魚種における飼育実験系の確立と環境影響メカニズムの解析.

2006.08～2007.03, 分担, 水産重要魚種における飼育実験系の確立と環境影響メカニズムの解析.

2006.10～2009.03, 代表, 水産物の保全・畜養技術開発事業.

2005.04～2006.03, 分担, 資源動向要因分析調査「親魚成熟状態生理分析」.

2004.04～2005.03, 分担, 資源動向要因分析調査「親魚成熟状態生理分析」.

2004.04～2005.03, 代表, 東シナ海産マサバの年齢と成長.

2005.04～2006.03, 代表, ゴマサバの成長解析.

寄附金の受入状況

2004年度, （株）東和食品, （財）東和食品研究振興会「魚類の種苗生産における卵質低下の分子機構の解明」.

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