九州大学-研究者情報 [川又理樹 (助教) 生体防御医学研究所細胞機能制御学部門]

1.	Masaki Kawamata, Hiroshi I. Suzuki, Ryota Kimura, Atsushi Suzuki, Optimization of Cas9 activity through the addition of cytosine extensions to single-guide RNAs., Nature Biomedical Engineering, 10.1038/s41551-023-01011-7, 7, 762-691, Accepted: 17 February 2023, 2022.04, [URL], The precise regulation of the activity of Cas9 is crucial for safe and efficient editing. Here we show that the genome-editing activity of Cas9 can be constrained by the addition of cytosine stretches to the 5′-end of conventional single-guide RNAs (sgRNAs). Such a ‘safeguard sgRNA’ strategy, which is compatible with Cas12a and with systems for gene activation and interference via CRISPR (clustered regularly interspaced short palindromic repeats), leads to the length-dependent inhibition of the formation of functional Cas9 complexes. Short cytosine extensions reduced p53 activation and cytotoxicity in human pluripotent stem cells, and enhanced homology-directed repair while maintaining bi-allelic editing. Longer extensions further decreased on-target activity yet improved the specificity and precision of mono-allelic editing. By monitoring indels through a fluorescence-based allele-specific system and computational simulations, we identified optimal windows of Cas9 activity for a number of genome-editing applications, including bi-allelic and mono-allelic editing, and the generation and correction of disease-associated single-nucleotide substitutions via homology-directed repair. The safeguard-sgRNA strategy may improve the safety and applicability of genome editing..
2.	Masaki Kawamata, Takahiro Ochiya, Generation of genetically modified rats from embryonic stem cells, PNAS, 107, 32, 14223-14228, 2010.08.
3.	Masaki Kawamata, Yutaka Tonomura, Tadashi Kimura, Yukihiko Sugimoto, Teruyuki Yanagisawa, Katsuhiko Nishimori, Oxytocin-induced phasic and tonic contractions are modulated by the contractile machinery rather than the quantity of oxytocin receptor, Am J Physiol Endocrinol Metab, 292, 4, 992-999, 2007.04.

主要総説, 論評, 解説, 書評, 報告書等

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主要学会発表等

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1.	Masaki Kawamata, Hiroshi I Suzuki, Atsushi Suzuki, Rational optimization of versatile genome editing applicability by tuning CRISPR-Cas9 activity, The 31th Hot Spring Harbor Symposium, 2022.11.
2.	川又理樹、鈴木洋、鈴木淳史, プロモーター編集による新規グラデーションRainbow多細胞追跡技術の開発, 第45回日本分子生物学会年会, 2022.11.
3.	川又理樹、鈴木洋、鈴木淳史, DNAバーコード＋蛍光グラデーション同時標識による多細胞追跡技術の開発, 新学術領域「細胞ダイバース」研究成果報告公開シンポジウム, 2022.07.
4.	川又理樹、鈴木洋、鈴木淳史, DNA barcodeを介した勾配蛍光誘導による次世代型二重標識Lineage tracing技術の開発, 日本ゲノム編集学会第7回大会, 2022.06.
5.	川又理樹, 蛍光（位置情報）＋バーコード（1細胞情報）細胞同時標識システムの開発, 第四回若手ワークショップ（細胞ダイバース）, 2022.01.
6.	Masaki Kawamata, Hiroshi I Suzuki, Atsushi Suzuki, Development of CRISPR-Based Rainbow/Barcode Dual Labeling System, Hot Spring Harbor Symposium 2022, 2022.01.
7.	川又理樹、鈴木洋、鈴木淳史, CRISPR-Cas9による新規Rainbow/バーコード二重標識システムの開発, 第44回　日本分子生物学会年会, 2021.12.
8.	川又理樹、鈴木洋、鈴木淳史, 活性調節型CRISPR-Cas9による安全で効率的な遺伝子治療技術の開発, 日本ゲノム編集学会　第六回総会, 2021.06.
9.	川又理樹、木村亮太、鈴木淳史, CRISPR-Cas9の活性調節によるアレル選択的ゲノム編集法の開発, 第42回　日本分子生物学会年会, 2019.12.
10.	Masaki Kawamata,Ryota Kimura,Atsushi Suzuki, Allele-Selective Genome Editing by Fine-Tuning CRISPR-Cas9 Activity, Resonance Bio International Symposium, 2019.10.

学会活動

所属学会名

日本ゲノム編集学会

日本分子生物学学会

学会大会・会議・シンポジウム等における役割

2022.09.23～2022.09.25, 第2回反分野的生物医療学会, 学会幹事、セッション座長(9/23)、パネリスト（パネルディスカッション 9/25）.

2022.11.30～2022.11.30, 第45回日本分子生物学会年会, ワークショップのオーガナイザー.

2020.04～2023.06.20, Scienc-ome, 運営員（幹事）.

2021.06.16～2021.06.18, 日本ゲノム編集学会　第六回総会, 学会の運営員、「セッション1：ゲノム編集の医療応用」の座長.

2017.10.31～2017.11.01, The 27th Hot Spring Harbor International Symposium, シンポジウムの運営、司会進行、懇親会の企画や幹事を行った。.

2016.07.11～2016.07.12, 第19回生医研リトリート2016, 事務、運営、司会進行.

学術論文等の審査

年度	外国語雑誌査読論文数	日本語雑誌査読論文数	国際会議録査読論文数	国内会議録査読論文数	合計
2022年度	1	0	0	0	1
2021年度	1				1
2019年度	1				1
2017年度	2				2
2016年度	2				2

その他の研究活動

海外渡航状況, 海外での教育研究歴

Boston Children's Hospital, Harvard University, Harvard Stem Cell Institute, UnitedStatesofAmerica, 2013.07～2016.04.

受賞

最優秀賞, 第1回 FBCAP Innovation Contest, 2023.02.

ポスター賞、優秀賞, 日本ゲノム編集学会第7回大会, 2022.06.

最優秀発表賞, 新学術領域第四回若手ワークショップ（細胞ダイバース）, 2022.01.

研究資金

科学研究費補助金の採択状況(文部科学省、日本学術振興会)

2023年度～2025年度, 基盤研究(B), 代表, 領域限定1塩基ゲノム編集法による革新的遺伝子治療法の確立.

2021年度～2022年度, 挑戦的研究（萌芽）, 代表, 蛍光局在＋バーコード二重標識による新規lineage tracing法の開発.

2020年度～2021年度, 新学術領域研究, 代表, ゲノム編集細胞の蛍光+DNAバーコード二重標識技術開発による組織構築原理の解明.

2018年度～2019年度, 新学術領域研究（研究領域提案型）, 代表, アレル特異的mutation蛍光可視化技術による超高精度ゲノム編集法の開発.

2017年度～2018年度, 若手研究(B), 代表, 肝臓生着因子同定による移植型培養肝細胞の開発.

科学研究費補助金の採択状況(文部科学省、日本学術振興会以外)

2018年度～2020年度, AMED 国立研究開発法人日本医療研究開発機構, 代表, 活性調節型CRISPR/Cas9による完全遺伝子修復治療法の開発.

競争的資金(受託研究を含む)の採択状況

2021年度～2021年度, 福岡県新製品・新技術創出研究開発支援事業, 代表, 安全で効率的なゲノム編集を可能にする活性調節gRNAの汎用性拡張に向けた研究.

寄附金の受入状況

2022年度, 九州・大学発ベンチャー振興会議, 九州・大学発ベンチャー振興会議ギャップ資金/「活性調節ゲノム編集プラットフォームによる新規遺伝子治療法の開発と実用化」.

2021年度, ふくおかフィナンシャルグループ, キューテック研究開発助成金/安全装置搭載ゲノム編集法による革新的遺伝子治療プラットフォームの開発

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2017年度, 公益財団法人福岡県すこやか健康事業団, 平成28年度がん研究助成金
新規 lineage tracing システムによる肝臓癌起源細胞の同定.

2017年度, (公財)武田科学振興財団, (公財)武田科学振興財団「2017年度医学系研究奨励」
胚盤胞補完法による異種キメラ肝臓の作製.

学内資金・基金等への採択状況

2023年度～2023年度, AMED：橋渡し研究戦略的推進プログラム九州大学拠点シーズA, 代表, 精密1塩基編集技術による次世代型遺伝子治療法の開発.

2021年度～2021年度, 第Ⅳ期九大ギャップファンド, 代表, 活性調節型CRISPR-Cas9による精密ゲノム編集技術と革新的遺伝子治療法の開発.

2018年度～2018年度, 平成30年度　AMED橋渡し研究・新規開発シーズ, 代表, 新型CRISPR/Cas9での片側アレルゲノム編集法と高精度遺伝子治療法の開発.

九大関連コンテンツ

pure2017年10月2日から、「九州大学研究者情報」を補完するデータベースとして、Elsevier社の「Pure」による研究業績の公開を開始しました。

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生体防御医学研究所


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