九州大学-研究者情報 [岩森巨樹 (准教授) 農学研究院資源生物科学部門]

カイロトゲマウス幹細胞の解析
キーワード：カイロトゲマウス、iPS細胞、多能性幹細胞、組織幹細胞、自己複製
2022.04.

希少動物への応用を目指した非齧歯目哺乳類からの多能性幹細胞誘導と生殖細胞誘導
キーワード：多能性幹細胞、誘導多能性幹細胞、試験管内生殖細胞誘導、希少動物
2018.04.

性染色体上ヒストン脱メチル化酵素による性決定制御機構の解明
キーワード：性決定、生殖細胞、ヒストン脱メチル化酵素、性染色体、性差、脳
2018.04.

神経細胞分化におけるエピジェネティック制御機構の解析
キーワード：エピジェネティクス、神経幹細胞、神経分化、ヒストン脱メチル化酵素
2018.04.

生殖細胞の発生分化におけるエピジェネティック制御機構に関する研究
・ヒストン脱メチル化酵素による精子幹細胞制御機構
・精子形成過程・卵子形成過程におけるエピジェネティック制御機構
・初期胚発生過程におけるエピジェネティック制御機構
・精子形成過程におけるヒストンアセチル化制御機構の解析
キーワード：エピジェネティックス、精子幹細胞、精子形成、卵子形成、ヒストン脱メチル化酵素、ヒストンアセチル化
2012.10.

主要原著論文

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1.	岩森巨樹, 性染色体上ヒストン脱メチル化酵素による性スペクトラム制御, 月刊「細胞」, 56, 1, 43-46, 2024.01.
2.	Sultana Tasrin, Iwamori Tokuko, Iwamori Naoki, TSNAXIP1 is required for sperm head formation and male fertility., Reproductive Medicine and Biology, 10.1002/rmb2.12520, 22, 1, e12520, 2023.06, Purpose: TRANSLIN (TSN) and its binding partner TSNAX have been reported to contribute to a wide spectrum of biological activities including spermatogenesis. TSN accompanies specific mRNA transport in male germ cells through intercellular bridges. A testis-expressed protein TSNAXIP1 was reported to interact with TSNAX. However the role of TSNAXIP1 in spermatogenesis remained unclear. This study aimed to elucidate the role of TSNAXIP1 in spermatogenesis and male fertility in mice. Methods: TSNAXIP1 knockout (KO) mice were generated using the CRISPR-Cas9 system. The fertility, spermatogenesis, and sperm of TSNAXIP1 KO males were analyzed. Results: TSNAXIP1, and especially its domains, are highly conserved between mouse and human. Tsnaxip1 was expressed in testis, but not in ovary. TSNAXIP1 KO mice were generated, and TSNAXIP1 KO males were found to be sub-fertile with smaller testis and lower sperm count. Although no overt abnormalities were observed during spermatogenesis, lack of TSNAXIP1 induced sperm head malformation, resulting in a unique flower-shaped sperm head. Moreover, abnormal anchorage of the sperm neck was frequently observed in TSNAXIP1 null sperm. Conclusion: A testis-expressed gene TSNAXIP1 has important roles in sperm head morphogenesis and male fertility. Moreover, TSNAXIP1 could be a causative gene for human infertility..
3.	Tominaga Kaoru、Sakashita Eiji、Kasashima Katsumi、Kuroiwa Kenji、Nagao Yasumitsu、Iwamori Naoki、Endo Hitoshi, Tip60/KAT5 Histone Acetyltransferase Is Required for Maintenance and Neurogenesis of Embryonic Neural Stem Cells., International Journal of Molecular Sciences, 10.3390/ijms24032113, 24, 3, 2113, 2023.01, Epigenetic regulation via epigenetic factors in collaboration with tissue-specific transcription factors is curtail for establishing functional organ systems during development. Brain development is tightly regulated by epigenetic factors, which are coordinately activated or inactivated during processes, and their dysregulation is linked to brain abnormalities and intellectual disability. However, the precise mechanism of epigenetic regulation in brain development and neurogenesis remains largely unknown. Here, we show that Tip60/KAT5 deletion in neural stem/progenitor cells (NSCs) in mice results in multiple abnormalities of brain development. Tip60-deficient embryonic brain led to microcephaly, and proliferating cells in the developing brain were reduced by Tip60 deficiency. In addition, neural differentiation and neuronal migration were severely affected in Tip60-deficient brains. Following neurogenesis in developing brains, gliogenesis started from the earlier stage of development in Tip60-deficient brains, indicating that Tip60 is involved in switching from neurogenesis to gliogenesis during brain development. It was also confirmed in vitro that poor neurosphere formation, proliferation defects, neural differentiation defects, and accelerated astrocytic differentiation in mutant NSCs are derived from Tip60-deficient embryonic brains. This study uncovers the critical role of Tip60 in brain development and NSC maintenance and function in vivo and in vitro..
4.	Wang Y, Iwamori T, Kaneko T, Iida H, Iwamori N., Comparative distributions of RSBN1 and methylated histone H4 Lysine 20 in the mouse spermatogenesis, PLOS One, 10.1371/journal.pone.0253897, 16, 6, e0253897, 2021.06, During spermatogenesis, nuclear architecture of male germ cells is dynamically changed and epigenetic modifications, in particular methylation of histones, highly contribute to its regulation as well as differentiation of male germ cells. Although several methyltransferases and demethylases for histone H3 are involved in the regulation of spermatogenesis, roles of either histone H4 lysine 20 (H4K20) methyltransferases or H4K20 demethylases during spermatogenesis still remain to be elucidated. Recently, RSBN1 which is a testis-specific gene expressed in round spermatids was identified as a demethylase for dimethyl H4K20. In this study, therefore, we confirm the demethylase function of RSBN1 and compare distributions between RSBN1 and methylated H4K20 in the seminiferous tubules. Unlike previous report, expression analyses for RSBN1 reveal that RSBN1 is not a testis-specific gene and is expressed not only in round spermatids but also in elongated spermatids. In addition, RSBN1 can demethylate not only dimethyl H4K20 but also trimethyl H4K20 and could convert both dimethyl H4K20 and trimethyl H4K20 into monomethyl H4K20. When distribution pattern of RSBN1 in the seminiferous tubule is compared to that of methylated H4K20, both dimethyl H4K20 and trimethyl H4K20 but not monomethyl H4K20 are disappeared from RSBN1 positive germ cells, suggesting that testis-specific distribution patterns of methylated H4K20 might be constructed by RSBN1. Thus, novel expression and function of RSBN1 could be useful to comprehend epigenetic regulation during spermatogenesis..
5.	Naoki IWAMORI, Kaoru Tominaga, Sato Tetsuya, Kevin Riehle, Tokuko Iwamori, Yasuyuki Ohkawa, Cristian Coarfa, Etsuro Ono, Martin M. Matzuk, MRG15 is required for pre-mRNA splicing and spermatogenesis, PNAS, 10.1073/pnas.1611995113, 113, 37, E5408-E5415, 2016.09, Splicing can be epigenetically regulated and involved in cellular differentiation in somatic cells, but the interplay of epigenetic factors and the splicing machinery during spermatogenesis re- mains unclear. To study these interactions in vivo, we generated a germline deletion of MORF-related gene on chromosome 15 (MRG15), a multifunctional chromatin organizer that binds to methylated histone H3 lysine 36 (H3K36) in introns of transcriptionally active genes and has been implicated in regulation of histone acetyla- tion, homology-directed DNA repair, and alternative splicing in somatic cells. Conditional KO (cKO) males lacking MRG15 in the germline are sterile secondary to spermatogenic arrest at the round spermatid stage. There were no significant alterations in meiotic division and histone acetylation. Specific mRNA sequences disappeared from 66 germ cell-expressed genes in the absence of MRG15, and specific intronic sequences were retained in mRNAs of 4 genes in the MRG15 cKO testes. In particular, introns were retained in mRNAs encoding the transition proteins that replace histones during sperm chromatin condensation. In round spermatids, MRG15 colocalizes with splicing factors PTBP1 and PTBP2 at H3K36me3 sites between the exons and single intron of transition nuclear protein 2 (Tnp2). Thus, our results reveal that MRG15 is essential for pre- mRNA splicing during spermatogenesis and that epigenetic regula- tion of pre-mRNA splicing by histone modification could be useful to understand not only spermatogenesis but also, epigenetic disor- ders underlying male infertile patients..
6.	Dae Hwi Park, Sung Jun Hong, Ryan D. Salinas, Siyuan John Liu, Shawn W. Sun, Jacopo Sgualdino, Giuseppe Testa, Martin M. Matzuk, N. IWAMORI, Daniel A. Lim, Activation of Neuronal Gene Expression by the JMJD3 Demethylase Is Required for Postnatal and Adult Brain Neurogenesis, CELL REPORTS, 10.1016/j.celrep.2014.07.060, 8, 5, 1290-1299, 2014.09.
7.	Naoki Iwamori, Tokuko Iwamori, Martin M. Matzuk, H3K27 demethylase, JMJD3, regulates fragmentation of spermatogonial cysts., PLoS ONE, 10.1371/journal.pone.0072689, 8, 8, e72689, 2013.08.
8.	Iwamori N, Iwamori T, Matzuk MM, Characterization of spermatogonial stem cells lacking intercellular bridges and genetic replacement of a mutation in spermatogonial stem cells., PLoS One, 7, 6, e38914, 2012.06.
9.	Iwamori N, Zhao M, Meistrich ML, Matzuk MM, The testis-enriched histone demethylase, JMJD2D, regulates methylation of histone H3 lysine 9 during spermatogenesis but is dispensable for fertility. , Biol. Reprod, 84, 6, 1225-1234, 2011.06.

主要総説, 論評, 解説, 書評, 報告書等

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1.	岩森巨樹, 性を決定するエピジェネティック制御, アグリバイオ, 8(5): 79-85, 2024.05.
2.	岩森巨樹, 性決定及び性差構築に関わるエピジェネティック制御, Precision Medicine, 6(10):57-62, 2023.09.
3.	岩森巨樹, 性分化に関わるエピジェネティック制御, アグリバイオ, 2023.02.
4.	岩森巨樹, 性分化に関わるエピジェネティック制御, 月刊「細胞」, 2023.01.
5.	岩森巨樹, 性分化を制御するエピジェネティック分子機構, 月刊「細胞」, 2021.12.
6.	岩森巨樹, 性分化を制御するエピジェネティック分子機構, 月刊「細胞」, 2020.07.
7.	N. IWAMORI, Regulation of spermatogonial stem cell compartment in the mouse testis, Fukuoka Igaku Zassh, 2014.01.
8.	岩森巨樹、岩間厚志, 精子幹細胞の自己複製に関する転写制御機構, 蛋白質核酸酵素増刊号, 2007.12.

主要学会発表等

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1.	Kojima Mio, Fujita Mayu, Iwamori Tokuko, Iwamori Naoki, Histone Demethylase Activity of UTX contributes to the Epigenetic regulation of Sexual Spectrum, Society for the Study of Reproduction 57th annual meeting, 2024.07.
2.	Yoshida Aya, Nomura Hozumi, Iwamori Tokuko, Iwamori Naoki, The role of CDYL2 in the differentiation of spermatogonial stem cells, International Society for Stem Cell Research 2024 annual meeting, 2024.07.
3.	古島波音、藤田真由、岩森督子、岩森巨樹, 性分化に対するヒストン脱メチル化酵素UTXの脱メチル化活性の影響, 第46回日本分子生物学会大会, 2023.12, 雌雄の組織・細胞は性差を持つことが示されているが、性染色体上遺伝子による性差構築には不明な点が多い。UTXとUTYは性染色体上に位置するH3K27脱メチル化酵素であり、その活性は大きく異なっている。UTXの脱メチル化活性は高く、UTYの脱メチル化活性は低いことに加え、UTXはX染色体不活化を逃れる遺伝子であるため、X染色体を2本持つ雌と、X染色体とY染色体を1本ずつ持つ雄を比較すると、理論上雌の方が高いH3K27脱メチル化活性を持つ。先行研究によって、H3K27メチル化制御は性分化における重要なエピジェネティック制御であることが示されている。そのため、UTX、UTYも性分化制御に関わっている可能性が考えられる。そこで、本研究では、UTXとUTYの脱メチル化活性の差が性決定に関与しているか調べることを目的とする。　これまでにUTXの活性を低く転換させるアミノ酸部位及びアミノ酸変異を同定し、CRISPR-Cas9法を用いてマウス受精卵に対してゲノム編集を行うことで変異マウスを作製した。変異マウスを交配することで、雄型H3K27脱メチル化活性を持つ雌マウスを含む様々なH3K27脱メチル化活性を持つマウスを作製した。これらの変異マウスから性分化期にあたる胎齢13.5日齢の胎仔生殖腺をサンプルとして回収し、形態観察並びにRNAシークエンスとリアルタイムPCRによる遺伝子解析・比較を行った。形態観察の結果、H3K27脱メチル化活性を転換させても性転換などの形態的変化は確認できなかった。しかし、RNAシークエンスの結果、主成分分析において、変異導入雄が雌型に近づくという結果が得られた。変異導入雄の遺伝子発現に関する解析を進めたところ、アンドロゲン産生に必須の酵素であるCYP17A1の遺伝子発現量がUTX変異によって減少したことが明らかになった。また、性分化に関係する遺伝子についてリアルタイムPCR行った結果、精巣分化に関わるSox9、卵巣分化に関わるWnt4の発現量に変化が見られた。　これらの結果から、UTXはマウス性分化のエピジェネティック制御に関与する可能性が示唆された。.
4.	古島波音、藤田真由、岩森督子、岩森巨樹, 性分化に対するヒストン脱メチル化酵素UTX及びUTYの脱メチル化活性の影響, 第45回日本分子生物学会大会, 2022.12.
5.	吉田綾、野村穂澄、岩森督子、岩森巨樹, 精子形成におけるクロモドメインタンパク質CDYL2の役割, 第45回日本分子生物学会大会, 2022.12.
6.	北島光将、中島碧、岩森督子、岩森巨樹, 初期発生過程におけるH3K27me3形成に対するJMJD3の役割, 第45回日本分子生物学会大会, 2022.12.
7.	平山裕紀、岩森督子、岩森巨樹, RSBN1による生殖細胞形成のエピジェネティック制御, 第45回日本分子生物学会大会, 2022.12.
8.	陳嘉姿、岩森督子、岩森巨樹, JMJD3欠損による海馬Y染色体遺伝子の発現, 第115回日本繁殖生物学会大会, 2022.09.
9.	櫻井優輔、山村祐紀、岩森督子、岩森巨樹, 試験管内生殖細胞誘導を用いたマウス精子幹細胞(SSC)の動態解析, 第115回日本繁殖生物学会大会, 2022.09.
10.	Tasrin Sultana、Tokuko Iwamori、Naoki Iwamori, Localization and functional analysis of predominant testis expressed protein TSNAXIP1, 第115回日本繁殖生物学会大会, 2022.09.
11.	陳嘉姿、岩森督子、岩森巨樹, JMJD3による神経幹細胞制御〜脱分化が起こるかどうか, 第93回日本動物学会早稲田大会, 2022.09.
12.	Tasrin Sultana、岩森督子、岩森巨樹, TEX14部分ペプチドの抗腫瘍活性, 第93回日本動物学会早稲田大会, 2022.09.
13.	櫻井優輔、山村祐紀、岩森督子、岩森巨樹, 試験管内生殖細胞誘導を用いたマウス精子幹細胞の動態解析, 第93回日本動物学会早稲田大会, 2022.09.
14.	Tasrin Sultana, Tokuko Iwamori, Naoki Iwamori, TEX14部分ペプチドの抗腫瘍活性, 第78回九州・沖縄生殖医学会, 2022.04.
15.	Sakurako Shima, Tokuko Iwamori, Hiroshi Iida, Naoki Iwamori, Regulation of spermatogonial stem cells by H3K27 demethylases., The 52th SSR annual meeting, 2019.07.
16.	Naoki Iwamori, Sakurako Shima, Tokuko Iwamori, Hiroshi Iida, The role of H3K27 demethylases in the regulation of spermatogonial stem cells, ISSCR 2019, 2019.06.
17.	島桜子、飯田弘、岩森巨樹, H3K27脱メチル化酵素による精子幹細胞制御機構の解析, 日本動物学会　第89回大会, 2018.09.
18.	Sakurako Shima、Hiroshi Iida、Naoki Iwamori, Regulation of spermatogonial stem cells by H3K27 demethylases., ISSCR 2018, 2018.06.
19.	Naoki Iwamori, Sakurako Shima, Tokuko Iwamori, Hiroshi Iida, The role of H3K27 demethylases in the regulation of spermatogonial stem cells, 第16回幹細胞シンポジウム, 2018.06, 精子形成の起源となる精子幹細胞の制御機構を解析し、ヒストンH3リジン27（H3K27）の脱メチル化酵素が幹細胞老化に関与することを見出した。生殖細胞特異的にH3K27脱メチル化酵素JMJD3を欠損した雄マウスは長期にわたり良好な繁殖能力を示し、実際に、精巣内の精子幹細胞数増加、脱分化的幹細胞供給の増加が見られた。精巣以外の組織を含めたJMDJ3による幹細胞制御機構を調べたところ、神経幹細胞の分化に寄与することが明らかとなったほか、飢餓ストレスを与えた際に肝臓においてミトコンドリア脂肪酸酸化経路を活性化することが示された。精巣においてもエネルギー代謝経路、オートファジー経路とJMJD3の関連が幹細胞老化に関わることが示され、幹細胞制御に応用できる可能性が示唆された。.
20.	Iwamori N, Iwamori T, Shima S, Iida H, The role of JMJD3 in the regulation of intercellular bridges during the fragmentation of spermatogonial cysts., The 4th WCRB, 2017.09.
21.	岩森巨樹、冨永薫、岩森督子、大川恭行、小野悦郎、Martin M Matzuk、飯田弘, 精子形成に必須のエピジェネティックスプライシング制御機構, 第88回日本動物学会大会, 2017.09.
22.	岩森巨樹, ゲノム改変技術の動物学への応用, 日本動物学会中国四国地区、九州地区合同研修会, 2017.09.
23.	Iwamori N, Iwamori T, Iida H, The role of JMJD3 in the regulation of spermatogonial stem cells., ISSCR 2017, 2017.06.
24.	岩森巨樹, 冨永薫, 佐藤哲也, 岩森督子, 大川恭行, 小野悦郎, Martin M. Matzuk, 精子形成過程に必須のヒストン修飾によるスプライシング制御機構, 第39回日本分子生物学会年会, 2016.12, 近年、スプライシングがエピジェネティックに制御され、細胞分化に関わることが報告された。しかし、精子形成過程におけるエピジェネティック制御因子とスプライシング機構との相関関係ついては明らかにされていない。この関係性を明らかにするために、本研究ではクロマチン制御因子の一つMRG15の精子形成における役割を解析した。MRG15はトリメチル化ヒストンH3リジン36（H3K36me3）を認識し、ヒストンアセチル化制御を介した転写制御、DNA損傷に応答した相同組み換え修復、選択的スプライシング制御など多様な機能をもつ。MRG15は様々な組織において発現しているが、精巣において特に高発現を示し、パキテン期精母細胞で発現が始まり、円形精細胞で最も高い発現を示した。生殖細胞特異的MRG15欠損コンディショナルノックアウトマウスを作製したところ、雄マウスは不妊となった。その精子形成は円形精細胞で停止しており、ヒストンH4のアセチル化、減数分裂に異常には見られなかった。精細胞で重要な役割を果たすTpn1/2、Prm1/2の発現を調べたところ、MRG15欠損によりイントロンを含んだままのTnp2転写産物が蓄積していた。RNA-seq解析から、MRG15欠損により、66遺伝子から特異的配列が消失し、4遺伝子にイントロン配列が残存するスプライシング異常が見られた。さらに詳細な解析からTnp2を含めたこれら70遺伝子のほとんどにおいてMRG15がエキソン-イントロン境界領域に修飾されたH3K36me3を認識し、スプライシング制御因子PTBPを引き寄せることでpre-mRNAスプライシングを制御することが示された。以上のことから、MRG15を介したヒストン修飾によるエピジェネティックスプライシング制御が精子形成に必須であることが明らかとなった。本結果は精子形成の理解だけでなく後天的不妊の原因解明に役立つ可能性がある。.
25.	岩森巨樹, 冨永薫, 佐藤哲也, 岩森督子, 大川恭行, 小野悦郎, Martin M. Matzuk, MRG15はスプライシング制御を介して精子形成に必須の役割を果たす, 第34回九州実験動物研究会総会, 2016.10, 精子形成過程において、生殖細胞が分化する間、クロマチン構造、エピジェネティック修飾など核内構造が劇的に変化する。しかし、生殖細胞の各分化段階におけるクロマチン制御およびエピジェネティック制御と精子形成との関連については未だに不明な点が多い。本研究ではクロマチン制御因子の一つMRG15の精子形成における役割を解析した。MRG15はトリメチル化ヒストンH3リジン36（H3K36me3）を認識し、ヒストンアセチル化制御を介した転写制御、DNA損傷に応答した相同組み換え修復、選択的スプライシング制御など多様な機能をもつ。MRG15は様々な組織において発現しているが、精巣において特に高発現を示す。精巣におけるMRG15の発現を調べたところ、パキテン期精母細胞で発現が始まり、円形精細胞で最も高い発現を示した。生殖細胞特異的MRG15欠損コンディショナルノックアウトマウスを作製したところ、雄マウスは不妊であった。その精子形成は円形精細胞で停止しており、ヒストンH4のアセチル化、減数分裂に異常には見られなかった。精細胞で重要な役割を果たすTpn1/2、Prm1/2の発現を調べたところ、MRG15欠損によりイントロンを含んだままのTnp2転写産物が蓄積していることが分かった。ChIPおよびChIP-seqの結果からMRG15はH3K36me3を認識し、スプライシング制御因子PTBPを引き寄せることでTnp2のpre-mRNAスプライシングを制御していることが示唆された。以上のことから、MRG15を介したヒストン修飾によるエピジェネティックスプライシング制御が精子形成制御に重要な役割を持つことが示された。.
26.	岩森巨樹, 冨永薫, 岩森督子, 佐藤哲也, 大川恭行, 小野悦郎, Martin M. Matzuk, ヒストン修飾によるスプライシング制御が精子形成過程を制御する, 第9回日本エピジェネティックス研究会年会, 2015.05, 精子形成過程において、生殖細胞が分化する間、クロマチン構造、エピジェネティック修飾など核内構造が劇的に変化する。しかし、生殖細胞の各分化段階におけるクロマチン制御およびエピジェネティック制御と精子形成との関連については未だに不明な点が多い。本研究ではクロマチン制御因子の一つMRG15の精子形成における役割を解析した。MRG15はトリメチル化ヒストンH3リジン36（H3K36me3）を認識し、ヒストンアセチル化制御を介した転写制御、DNA損傷に応答した相同組み換え修復、選択的スプライシング制御など多様な機能をもつ。MRG15は様々な組織において発現しているが、精巣において特に高発現を示す。精巣におけるMRG15の発現を調べたところ、パキテン期精母細胞で発現が始まり、円形精細胞で最も高い発現を示した。生殖細胞特異的MRG15欠損コンディショナルノックアウトマウスを作製したところ、雄マウスは不妊であった。その精子形成は円形精細胞で停止しており、ヒストンH4のアセチル化、減数分裂に異常には見られなかった。精細胞で重要な役割を果たすTpn1/2、Prm1/2の発現を調べたところ、MRG15欠損によりイントロンを含んだままのTnp2転写産物が蓄積していることが分かった。ChIPおよびChIP-seqの結果からMRG15はH3K36me3を認識し、スプライシング制御因子PTBPを引き寄せることでTnp2のpre-mRNAスプライシングを制御していることが示唆された。以上のことから、MRG15を介したヒストン修飾によるエピジェネティックスプライシング制御が精子形成制御に関わっていることが示された。.
27.	N. IWAMORI, The role of H3K27 demethylase, JMJD3, in the regulation of spermatogonial stem cells, The 3rd SKLRB Symposium on Reproductive Biology, 2014.10.
28.	岩森巨樹, 岩森督子, 冨永薫, 小野悦郎, Martin M. Matzuk, クロマチン制御因子MRG15によるスプライシング制御は精子形成に必要である。, 第107回日本繁殖生物学会大会, 2014.08.

特許出願・取得

特許出願件数 0件

特許登録件数 1件

所属学会名

日本生殖医学会

幹細胞シンポジウム

日本動物学会

日本エピジェネティクス研究会

日本繁殖生物学会

日本分子生物学会

アメリカ繁殖生物学会

国際幹細胞学会

学協会役員等への就任

2023.04, 一般社団法人日本生殖医学会, SIG（Special Interest Group）生殖工学・再生医学　研究協力者.

学会大会・会議・シンポジウム等における役割

2020.09.23～2021.09.24, 日本繁殖生物学会, 優秀発表賞一次審査員.

2019.09～2019.09.04, 日本繁殖生物学会, 優秀発表賞一次審査員.

2018.09～2018.09.04, 日本繁殖生物学会, 優秀発表賞一次審査員.

2017.09.27～2017.09.29, The 4th WCRB (World Congress of Reproductive Biology), reviewer for abstract in fertilization and embryos session.

2016.09.11～2016.09.15, 日本繁殖生物学会, 第109回日本繁殖生物学会大会優秀発表賞一次審査員.

学術論文等の審査

年度	外国語雑誌査読論文数	国際会議録査読論文数	国内会議録査読論文数	合計
2024年度	2			2
2023年度	3			3
2022年度	2			2
2021年度	1			1
2020年度	1		8	9
2019年度			8	8
2018年度			5	5
2017年度		36		36
2016年度	1		3	4
2015年度	2			2
2014年度	1			1
2013年度	2			2
2012年度	2			2
2011年度	2			2

海外渡航状況, 海外での教育研究歴

Department of Pathology and Immunology, Center for Reproductive Medicine, Baylor College of Medicine, UnitedStatesofAmerica, 2012.07～2012.09.

Department of Pathology and Immunology, Baylor College of Medicine, UnitedStatesofAmerica, 2006.04～2012.06.

科学研究費補助金の採択状況(文部科学省、日本学術振興会)

2022年度～2024年度, 挑戦的研究（萌芽）, 分担, 生殖細胞間架橋因子RBM44とKIAA1210が形成する非膜オルガネラの解明.

2022年度～2024年度, 基盤研究(C), 分担, 精子頭部の膜タンパク質MS4Aファミリーが受精機構で果たす役割.

2020年度～2021年度, 新学術領域研究, 代表, 性染色体上ヒストン脱メチル化酵素により構築される性スペクトラム.

2019年度～2020年度, 挑戦的研究（萌芽）, 代表, 性染色体上ヒストン脱メチル化酵素活性転換マウスの作製と性分化への影響.

2019年度～2021年度, 基盤研究(C), 分担, ダイナミックな精子形成能を持つ生殖細胞特異的結合因子KIAA1210の機能解析.

2019年度～2021年度, 基盤研究(B), 代表, 幹細胞老化に関わるH3K27エピジェネティック制御機構の解明.

2017年度～2018年度, 新学術領域研究, 代表, H3K27エピジェネティックネットワークによる幹細胞老化・抗老化分子機構の解明.

2014年度～2016年度, 若手研究(A), 代表, 幅広い動物種に有効な高効率精子幹細胞培養法の開発.

競争的資金(受託研究を含む)の採択状況

2021年度～2021年度, イノベーション創出強化推進事業（農研機構）, 分担, 食資源動物としての倍数体ほ乳動物の開発.

寄附金の受入状況

2017年度, 公益財団法人武田科学振興財団, 医学系研究継続助成.

2014年度, 公益財団法人武田科学振興財団 , 医学系研究奨励（基礎）.

学内資金・基金等への採択状況

2014年度～2014年度, 九州大学P&P「ゲノム・エピゲノム研究拠点形成」公募共同研究, 代表, ヒストン脱メチル化酵素JMJD3による精子幹細胞制御機構の解析.


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